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專注于生物學(xué)試劑及試劑盒領(lǐng)域
服務(wù)熱線：18101056239
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產(chǎn)品型號：BC3180-50T/48S
更新時間：2024-04-11
廠商性質(zhì)：生產(chǎn)廠家
訪 問 量 ：1214
010-50973130
產(chǎn)品分類
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雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒說明書
可見分光光度法
貨號: BC3180
規(guī)格: 50T/48S
產(chǎn)品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致，有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。
| 試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
| 提取液 | 自備 | - |
| 試劑一 | 液體50 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
| 標準品 | 液體1 mL×1支，5 mg/mL | -20℃保存 |
溶液的配制：
提取液：自備。根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水。
產(chǎn)品說明:
樣本可溶性蛋白質(zhì)含量常常用于酶活性計算。此外，可溶性蛋白質(zhì)含量也用于食品等質(zhì)量分析。
強堿性溶液中，雙縮脲與CuSO4形成紫色絡(luò)合物；紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比，而與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關(guān)，故可用來測定蛋白質(zhì)含量。該方法適用于蛋白質(zhì)濃度高的樣本，尤其是動物材料。
技術(shù)指標：
低檢出限：0.1304 mg/mL
線性范圍：0.5-10 mg/mL
注意：實驗之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品：
離心機、可見分光光度計、移液器、1mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水。
操作步驟：具體操作步驟詳見“產(chǎn)品資料"附件
一、樣本處理（可適當調(diào)整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）
1、液體樣本：澄清無色液體樣本可以直接測定。
2、組織樣本：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液）冰浴勻漿，8000g，4℃離心10min，取上清，即待測液。（動物樣本常常需要稀釋）
3、細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（104個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1mL提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后8000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
二、測定步驟
分光光度計預(yù)熱30min，調(diào)節(jié)波長到540nm，蒸餾水調(diào)零。
空白管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL蒸餾水，1000μL試劑一，混勻后室溫靜置15min，于540nm比色，記為A空白管。
標準管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL標準液，1000μL試劑一，混勻后室溫靜置15min，于540nm比色，記為A標準管。
測定管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL待測液，1000μL試劑一，混勻后室溫靜置15min，于540nm比色，記為A測定管。
注意：空白管和標準管只需測定1-2次。
注意事項：
樣本蛋白濃度須在0.5~10mg/mL范圍內(nèi)，低于0.5mg/mL不能用此法，高于10mg/mL須做相應(yīng)稀釋。因此測定前用1~2個樣做預(yù)實驗，確保蛋白濃度在0.5~10mg/mL范圍內(nèi)。
如果吸光值大于0.44，則需要將樣本用蒸餾水稀釋后再測定。
待測樣本蛋白提取可用生理鹽水、雙蒸水或不含蛋白的PBS提取。該法受硫酸銨、Tris緩沖液干擾，提取液中應(yīng)不含這些物質(zhì)；否則改用BCA蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。
雙縮脲法蛋白含量檢測試劑盒
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